Diversity of Culturable Endophytic Bacteria from Seeds of Chenopodium quinoa in Xizang

WANGShengping, ZHUOMaqucuo, JIANGZhibing, TANJianxin, TONGJian

Chin Agric Sci Bull ›› 2026, Vol. 42 ›› Issue (18) : 25-32.

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Chin Agric Sci Bull ›› 2026, Vol. 42 ›› Issue (18) : 25-32. DOI: 10.11924/j.issn.1000-6850.casb2025-0548

Diversity of Culturable Endophytic Bacteria from Seeds of Chenopodium quinoa in Xizang

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Abstract

To explore the species and diversity of culturable endophytic bacteria of quinoa seeds in Xizang, and to enrich the resources of endophytic bacteria in quinoa seeds, quinoa seeds were collected from Lhasa, Shigatse, and Nyingchi in Xizang. The species and community structure characteristics of their endophytic bacteria were identified using traditional isolation and cultivation methods. A total of 1,675 strains of endophytic bacteria were obtained through isolation and cultivation. Based on 16S rRNA sequence analysis and morphological characteristics, they were classified into 118 species, 35 genera, 16 families, 7 orders, 4 classes, and 3 phyla. The dominant species were Pantoea agglomerans, Bacillus altitudinis, and Bacillus siamensis. Six types of culture media were used in the experiment, with NA medium showing the highest isolation frequency of 23.1% (387 strains). α-diversity analysis revealed that the culturable endophytic bacteria of quinoa seeds in Lhasa exhibited higher species dominance and evenness, while Nyingchi showed better species richness and relative abundance compared to other two regions. The culturable endophytic bacteria in Xizang quinoa seeds are rich and diverse, demonstrating potential research value.

Key words

Xizang Chenopodium quinoa / culturable endophytic bacteria / dominant bacterial community / 16S rRNA gene identification / α-diversity / isolation media / species richness / regional differences

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WANG Shengping , ZHUO Maqucuo , JIANG Zhibing , et al . Diversity of Culturable Endophytic Bacteria from Seeds of Chenopodium quinoa in Xizang[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin. 2026, 42(18): 25-32 https://doi.org/10.11924/j.issn.1000-6850.casb2025-0548

References

[1]
马玉馨, 潘雪宇, 张钰泉, 等. 藜麦皂苷生物合成的转录组学分析[J/OL]. 分子植物育种, https://link.cnki.net/urlid/46.1068.S.20240323.1317.002.
[2]
陶小所, 姚晓华, 吴昆仑, 等. 基于表型和基因型的藜麦种质资源遗传多样性分析[J]. 西北农业学报, 2024, 33(5):798-809.
[3]
JACOBSEN S E, MUJICA A, JENSEN C R. The resistance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) to adverse abiotic factors[J]. Food reviews international, 2003, 19(1/2):99-109.
[4]
张学俭, 刘文瑜, 杨发荣, 等. 甘肃高寒区藜麦种质适应性评价[J/OL]. 草原与草坪, https://link.cnki.net/urlid/62.1156.S.20240612.1504.007.
[5]
梁嘉琪, 刘瑞香, 郭占斌. 藜麦的饲用价值及对育成牛生长性能与经济效益的影响[J]. 中国饲料, 2024(5):143-148.
[6]
王洋, 潘晓为, 杜会石, 等. 藜麦植物资源开发利用与抗逆性研究进展[J]. 吉林师范大学学报(自然科学版), 2023, 44(4):118-122.
[7]
黄杰, 杨发荣, 刘文瑜, 等. 甘肃临夏高寒区饲用藜麦产草性能和营养价值[J]. 草业科学, 2024, 41(5):1201-1209.
[8]
石佳, 徐爽, 王博, 等. 盐地碱蓬叶片可培养细菌的分离及促生菌的筛选鉴定[J]. 大连海洋大学学报, 2022, 37(2):235-243.
[9]
周洁. 青藏高原青稞种植土壤中可培养细菌多样性的初步研究[D]. 长沙: 湖南农业大学, 2022.
[10]
谢金晶, 朱绍玮, 黄荣, 等. 草地早熟禾种带可培养细菌多样性及18个菌株促生特性研究[J]. 草业学报, 2024, 33(12):134-146.
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[11]
张家豪, 陆洁淼, 丁钰婷, 等. 西红花根际可培养细菌菌群结构、多样性及分布规律[J]. 中草药, 2022, 53(8):2499-2505.
[12]
孔凡洲, 于仁成, 徐子钧, 等. 应用Excel软件计算生物多样性指数[J]. 海洋科学, 2012, 36(4):57-62.
[13]
徐艺逸, 曹敏, 徐国瑞. 云南省三种典型气候带凋落物层弹尾类多样性分布格局[J]. 生态学报, 2020, 40(14):5008-5017.
[14]
黄雅丹, 付灿, 李强. 喀斯特石漠化治理区钙果种植年限对根内细菌群落的影响[J]. 微生物学报, 2024, 64(6):2057-2070.
[15]
吕路琼, 欧阳由男, 叶淑珍, 等. 不同培养条件对小麦根际可培养微生物影响[J]. 浙江农业科学, 2024, 65(2):287-291.
植物根际微生物群落对植物健康生长有重要影响,分离培养其微生物对农作物促生增产具有重要意义。在微生物培养过程中,培养基类型与充氧量对根际微生物富集情况不同。该研究采用16S rRNA高通量测序技术与生物信息学分析对使用不同培养条件小麦根际细菌群落特征与功能进行分析。研究表明,小麦根际微生物群落主要由γ-变形菌纲,拟杆菌纲和芽孢杆菌纲组成,且培养基类型和充氧量显著影响其丰度。FAPROTAX功能预测表明,小麦根际微生物富含的优势菌群主要与化能异养、发酵、碳循环、氮循环、铁呼吸等功能相关,对植物生长发育具有重要作用。研究结果为小麦根际微生物培养及微生物资源的开发利用提供重要依据。
[16]
张青青, 董醇波, 邵秋雨, 等. 杜仲种子内生微生物群落组成及生态功能分析[J]. 林业科学研究, 2023, 36(2):50-60.
[17]
任毓忠. 新疆棉花细菌性烂铃病发病机理及传播途径的研究[D]. 石河子: 石河子大学, 2014.
[18]
郭鹤宝, 何山文, 王星, 等. 水稻种子内生泛菌(Pantoea spp.)系统发育多样性及其促生功能[J]. 微生物学报, 2019, 59(12):2285-2295.
[19]
郭萌. 大白菜软腐病新病原菌Pantoea agglomerans鉴定及抗性鉴定方法[D]. 哈尔滨: 东北农业大学, 2019.
[20]
涂艳, 薛寒, 姜宁, 等. 山东省三市核桃黑斑病病原菌分离鉴定[J]. 陆地生态系统与保护学报, 2023, 3(6):61-67.
[21]
舒然. 引起李细菌性穿孔病的Pantoea agglomerans快速检测技术及药剂活性评价[D]. 贵阳: 贵州大学, 2022.
[22]
曾晓敏. 海拔梯度下微生物群落适应格局对土壤碳周转的影响[D]. 武汉: 华中农业大学, 2023.
[23]
冯永钰, 脱云飞, 何霞红, 等. 栗子坪自然保护区不同植被类型土壤理化特性对土壤微生物群落多样性的影响[J]. 东北林业大学学报, 2024, 52(10):95-103.
[24]
向前胜, 张登山, 孙奎, 等. 高寒地区不同海拔梯度西北小檗生境土壤微生物群落结构及多样性分析[J]. 西北植物学报, 2021, 41(6):1036-1050.
[25]
张于光, 宿秀江, 丛静, 等. 神农架土壤微生物群落的海拔梯度变化[J]. 林业科学, 2014, 50(9):161-166.
[26]
汪运祥, 吴航湦, 何冬梅, 等. 郭岩山自然保护区丝栗栲天然林分土壤微生物群落沿海拔梯度变化[J]. 林业科学研究, 2023, 36(6):134-143.
[27]
王莹, 丁涛, 周龙武, 等. 元宝山冷杉冬季根际土壤微生物沿海拔梯度的变化特征[J]. 广西植物, 2025, 45(1):147-160.
[28]
郭楠, 陈港, 马红霞, 等. 不同培养基对固沙先锋植物羽毛针禾种子萌发的影响[J]. 种子, 2024, 43(6):146-152.
[29]
张泽宇, 肖扬, 詹亚斌, 等. 不同营养类型培养基番茄内生细菌群落结构研究[J]. 江苏农业科学, 2023, 51(11):128-133.
[30]
王泽, 贾晟楠, 华智超, 等. 不同培养基对土壤细菌可培养性的影响[J]. 沈阳师范大学学报(自然科学版), 2022, 40(1):48-53.
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